این مقاله تکنولوژی تنوع آرایه ای را در بررسی زیتون نوع olea europaea را مورد بررسی قرار می دهد.دو گونه ژنتیکی pstl/taql و ترکیبات آنها بررسی شده و تفاوت های ژنتیکی در بانک پلاسمای ژنی نگه داری می شود  world olive germplasm bank (wogb) این تحقیقات بر پایه DNA و89 گونه متفاوت زیتون است .روش دوم تحقیق بر اساس DNA  والدین گیاه است .picual وarbequina به ترتیب ژن های گیاه مادری و پدری هستند که از طریق جدا کردن نشانه های ژنتیکی تفاوت های آنها قابل رسم می باشند .این نقشه یک بستر کاری برای دنبال کردن توالی نژادی زیتون و اجرای پروژه oleagen خواهد شد .این پروژه دارای نتیج  قابل استناد و هزینه کمی خواهد بود و مورد توجه محقققان است .

درخت زیتون یا همان Olea europaea یکی از قدیمی ترین درختان حوزه مدیترانه است که اهمیت اقتصادی بالایی دارد.این گیاه در حدود 1200 مشخصه بارز دارد که مهمترین آنها اینست که تفاوت ژنی این گیاه و خواص منحصر به فرد هر گونه ،بسیار گوناگون است .این تفاوت ها از روش های ملکولی از جمله rapds شناسایی می شوند و یا روش هایی مانند AFLP,SCAR,ISSR,SNP ،علی رقم تمامی تحقیقات انجام شده هنوز هم کمبود اطلاعاتی در بسیاری جنبه های مربوطه وجود دارد به طور مثال کنترل ژنتیکی خاص برای به وجود آوردن ژن های مورد نظر در گیاه و همچنین هنوز QTL موجود در گیاه ناشناخته مانده است.

اصلی ترین محدودیت در مسیر تحقیقات مربوط به QTL زمان مورد نیاز جهت رشد و بالغ شدن گیاه تا میوه دادن و به ثمر رسیدن محصول است .اگر روش های جدید این عدم تعادل را بهبود و فرایند حاصل شدن میوه رسیده را سرعت بخشند احتمال برطرف شدن کمبود اطلاعات هست.یکی از روش های سرعت بخش Chiquitita نام دارد.اگرچه فعالیت های متوالی پروژه oleagen و همچنین مطالعات ژنتیکی مربوط به QTL و روش LD هم نقش عمده در تولید اطلاعات معتبر و کم هزینه ،دارند.

نشانگرهای مولکولی(DArT,SSR,SNP) و ویژگی های برزشناختی در بزرگترین مجموعه جرم پلاسم زیتون دنیا (انجمن  پژوهش و آموزش کشاورزی و شیلات، مرکز آلامدا دل آبیسپو، کوردوبا در اسپانیا) مورد استفاده قرار گرفته است تا الگوهای تنوع ژنتیکی و ساختار اصلی ژنتیکی را بین 361 شماره دسترسی زیتون بررسی کند.  بعلاوه، داده های نشانگر برای ساخت گروهی از مجموعه های هسته با دو الگوریتم متفاوت (MSTRAT و پاورکور) برپایه استراتژی بیشینه سازی استفاده شدند. نتایج ما تصدیق می کنند که مجموعه جرم پلاسم، منبعی سودمند از مواد گوناگون ژنتیکی است. هم چنین دریافتیم که خاستگاه جغرافیایی، عاملی مهم است که در زیتون تنوع ژنتیکی می سازد. زیرگروه های 18، 27، 36، 45و68 زیتون که به ترتیب %5، %7.5، %10، %12.5 و %19را از کل مجموعه جرم پلاسم نشان می دادند، براساس اطلاعات حاصل از همه گروه داده ها به همراه  هر نوع نشانگر منفردا در نظر گرفته شده انتخاب شدند.  طبق نتایج ما، مجموعه های هسته که بین %10 و %19 از کل اندازه مجموعه را نشان می دهند می توانند مناسب ترین مجموعه ها در حفظ قسمت عمده تنوع ژنتیکی یافت شده در این مجموعه در نظر گرفته شوند.  به سبب کارایی بالای آن در جذب همه وضعیت های الل/ویژگی های یافت شده درکل مجموعه، اندازه هسته دسترسی های شماره 68 می تواند حائز اهمیت خاصی برای کاربردهای حفظ ژنتیکی در زیتون باشد.  میانگین بالای فاصله ژنتیکی و تنوع و نمایندگی تقریبا برابر دسترسی ها از مناطق جغرافیایی متفاوت بیان می کنند که اندازه هسته از دسترسی های 36 می تواند مجموعه کارآمد برای پرورش دهندگان زیتون باشد.

کلیدواژه ها: جرم پلاسم زیتون، تنوع ژنتیکی، گروه های هسته، نشانگرهای مولکولی،پرورش زیتون

مقدمه:

در بیشتر کشت ها ، تاکید زیادی بر گردآوری و حفظ منابع ژنتیکی  شده است که منجر به استقرار بانک های جرم پلاسم آفسایت در سرتاسر جهان شده است. اهداف بنیادین یک بانک جرم پلاسم  حصول، حفظ، اثبات ، ارزیابی و ایجاد تنوع ژنتیکی گیاه نماینده قابل حصول از کشت مورد نظر است. اگرچه ، علی رغم توسعه قابل ملاحظه به دست آمده در دهه های اخیر جهت جلوگیری از زوال  ژنتیکی بسیاری از گونه های کشت، هنوز فاصله زیادی بین تنوع جرم پلاسم در دسترس گردآوری شده و استفاده موثر آن وجود دارد ( ون هینتوم و همکاران 2000)

چرا OEHHA (سازمان بهداشت محیط زیست) دستورالعمل های بهداشتی جدیدی را در ارتباط با ماهیان دریاچه ای و جویبارها ارائه می دهد ؟

دستورالعمل های مربوط به مصرف ماهی در سال 1987 در ارتباط با دریاچه ها مطرح شد. از آن زمان به بعد، نمونه های بسیار زیادی از ماهیان به عنوان بخشی از این مطالعات در ارتباط با آلودگی های جیوه ای آن در دریاچه ها و نهرها جمع آوری شد. سازمان بهداشت محیط زیست (OEHHA) از اطلاعات مربوط به این بررسی ها استفاده کرد تا دستورالعمل های مربوط به این دریاچه ها و توسعه دستورالعملهای مصرف که به بازتاب دادن اطلاعات علمی حال حاضر بر روی جیوه می پردازد، را به روز کند. همچنین ماهیان از نظر داشتن جیوه در این نهرها مورد بررسی قرار گرفتند. این سازمان از نتایج مربوطه استفاده کرد تا دستورالعملهایی را در ارتباط با ماهیگیری تفریحی افراد از این مجموعه دریاچه ها ارائه دهد.

مجموعه ای از این دستورالعمل ها در ارتباط با زنان باردار و افراد 17 سال به پایین که نسبت به متیل جیوه دارای حساسیت بیشتری می باشند ( بیشترین میزان جیوه ای که در ماهیان وجود دارد) کاربرد دارد. مجموعه دوم آن زنانی که در دوران بعد از بارداری و مردان نیز کاربرد دارد.

از آن جایی که متیل جیوه، سیستم عصبی را تحت تاثیر قرار می دهد، زنان باردار و کودکان زیر 17 سال برای خوردن این ماهیان می بایت نکات ایمنی را رعایت کنند.

چرا جیوه در ماهیان این مناطق یافت شد ؟

آلودگی جیوه در ماهیان یک مشکل جهانی می باشد. تشعشع توسط آتشفشان ها و نیروگاه های سوختی باعث انتشار جیوه در هوا می شوند که قبل از قرار گرفتن در درون اقیانوس ها، دریاچه ها و مخازن آب، می تواند در سرتاسر جهان پخش شود.

کراماتوفورها سلول‌های حاوی رنگ‌دانه در پوست حیواناتی مانند ماهی و سرپایان  هستند که دارای ویژگی‌های کروموموفیک (تغییر رنگ) و گونیوکرومیکِ کنترل‌پذیر (تغییر رنگین‌کمانی) می‌باشند. این حیوانات جهت استتار، مشخصات نوری پوست خود را کنترل می‌کنند و یا از آن برای ارتباطات خود استفاده می‌کنند. توانایی تکرار این ویژگی‌ها در ساختارهای پوست مصنوعیِ نرم، امکانات تازه‌ای را برای استتار فعال، تنظیم حرارتی و فوتوولتائیک‌های فعال می‌گشاید. این مقاله، طراحی و پیاده‌سازی کروماتوفورهای مصنوعی نرم و سازگار که مبتنی بر کروماتوفورهای پوستی در ماهی‌ها و سرپایان هستند را معرفی‌ می‌کند. ما کروماتوفورهای مصنوعی‌ را نشان می‌دهیم که توسط عضلات مصنوعی پلیمری الکترواکتیو تحریک شده و از ماهیچه‌های با واکنش سریع موجود در کروماتوفورهای طبیعی تقلید می‌کنند. نشان داده می‌شود که چگونه می‌توان به کرومومورفیزم الهام گرفته از زیست، توسط انبساط سطحی ساختارهای کشپار  دی الکتریکی و نیز با جابجاشدگی ایستایی مایع رنگدانه‌ای به داخل ملانوفور غشائی (پوستی) دست یافت.   

مقدمه:

کرومومورفیزم کنترل‌شدۀ پوست ویژگی‌ای است که توسط چندین ارگانیسم برای استتار فعال و همانطور که توسط Messenger (2001) بحث شده است، برای ارتباطات به کار گرفته می‌شود. برای مثال اختاپوس از فعل و انفعالات ماهیچه‌ای- عصبی ضربات مغز با سلول‌های پوستی کروموموفیک برای تولید الگوهای بصری بسیار پیچیده استفاده می‌کند، که این الگوها به منظور انفعالات اجتماعی‌شان با بدن آنها همگام هستند. سرپایانی مثل سپیداچ (ده پا)، Sepia officinalis، نشان داده شده در شکل 1 نیز وابسته هستند به میزان کارائی ظهور کروموموفیک آنها جهت سردرگم یا گمراه کردن توجه بصری شکارچیان طبیعی. انواع مختلفی از کروماتوفورهای زیست‌شناختی (بیولوژیکی) موجود است. 

چاپ ارگان، یا لایه به لایه ساخت زیستی رباتیک افزودنی از بافت سه بعدی عملکردی و سازه های بافت با استفاده از بافت بلوک های کروی ساختمان ، یک فنآوری به سرعت در حال در حال ظهور است که وعده برای تبدیل مهندسی بافت به صنعت پزشکی زیستی تجاری را داده است. بسیار آشکار است که صنایع مشابهی که بخوبی انجام شده به اجرای سیستم های رباتیک خودکار در مسیر ترجمه تجاری و موفقیت اقتصادی میپردازند . با این حال استفاده از چاپ گر های زیستی رباتیک به تنهایی برای توسعه مقیاس ساخت بزرگ صنعتی ارگ زیستی کافی نیست. طراحی و توسعه خط ارگان زیستی ساخت کاملا یکپارچه برای ترجمه تجاری فن آوری چاپ ارگان ضروری است. این مقاله به پیشرفت ها و چالش های اخیر در توسعه اجزای ضروری یک خط ارگان زیستی ساخت می پردازد .

مقدمه:

از آنجا که آغاز کار مفهوم چاپ بافت با استفاده از چاپگر های زیستی روباتیک برای لایه به لایه افزودنی ساخت زیستی بافت های عملکردی 3D و سازه های بافت با استفاده از بافت های کروی خودآرا دستخوش توسعه تدریجی است  و به عنوان جایگزینی معقول از پایین به بالا ی جامد به روش کلاسیک بالا به پایین و یا جامد مبتنی بر داربست در مهندسی بافت شناخته میشود .

اپرونها (دسته ای از ژنهای تنظیم شده با عملکردهای مرتبط) ویژگی های مشترکی از ژنوم های باکتریایی هستند. اخیرا دسته عملکرد ژنها در یوکاریوتهای مخمرها تا قارچ های رشته ای و گیاهان و جانوران گزارش شده است. دسته های ژنی میتوانند شامل ژنهای پارالوگوس  باشد که به احتمال زیادی توسط تکثیر ژنی ،افزایش میابد. با این حال ،نمونه های زیادی از خوشه های ژنی یوکاریوتی وجود دارد که  شامل ژنهای غیر همولوگ ولی از نظر عملکردی مرتبط  هستند که ارگانهای ژنی با ویژگی عملکردی مشابه اپرون ارائه می کند که شامل خوشه های ژنی برای  استفاده ازتابع مختلف نیتروژن و کربن در مخمرها برای تولید آنتیبیوتیک ، سموم و عوامل بیماری زا در قارچ های رشته ای ، برای تولید ترکیبات محافظتی در گیاهان و برای ایمنی ذاتی و تطبیقی  در حیوانات (منابع عمده سازگاری بافتی) میباشد.هدف این مقاله  ، بررسی ویژگی خوشه های  ژنی در یوکاریوتها و پروکاریوتها و اهمیت خوشه ها برای عملکرد موثر می باشد.

کلیدواژه: متابولیسم، محصولاتی طبیعی، انتی بیوتیک، بیماری زا، دفاع، کروماتین، رشد، مصونیت ذاتی و تطبیقی

مقدمه:

اپرونها (دسته هایی از ژنهای تنظیم شده با عملکرد مرتبط) ویژگی شناخته شده ی  ژنوم های پروکاریوتی است.بطور کلی ،ژنوم های باکتریایی و آرکیال ،شامل تعداد کم و مشخصی از اپرونهای محفوظ و تعداد بیشتری از اپرانهای نادر است.،خوشه ا ی شدن  ژنهای کار،در یوکاریوتها نیز ازمخمرها تا قارچ های رشته ای و پستانداران و نماتودها و گیاهان اتفاق میافتد.اعضای این خوشه های ژنی یوکاریوتی ،کمک به داشتن عملکرد مشترک اما نه در به اشتراک گذاری توالی شباهت، میکند. بنابراین این خوشه ها،ارگانهای ژنی تابعی را با ویژگی های مشابه اپرونها ارائه میدهد .اگرچه  ژنها بطور معمول به عنوان یک mRNA ی تک در پروکاریوتها رونویسی نمیشوند.این مقاله ،جنبه های ارگان ژنی در پروکاریوتها و یوکاریوتهایی را بررسی میکند که  برای درک اهمیت استقرار و حفاظت و نگهداری و انتشار خوشه های ژنی تابع و نیروهای تکاملی مرتبط است که ساختمان ژنوم را شکل میدهند.

نشریات جدید، وجود توالی IS900  را در مایکو مایکوباکتریوم مختلف از مایکوباکتریوم  اویوم زیرگونه های پاراتوبرکلوزیس گزارش دادند  .آغازگرهای مورد استفاده برای تشخیص   mapIS900 ، این توالی را تقویت کرده اند که باعث نتایج مثبت کاذب شد . در این مطالعه ، دو روش جدید PCR را برای تشخیص map توسعه دادیم.  روش اول بر اساسIS900  توالی با استفاده از آغازگرهای مختلفی که قبلا گزارش شده بود و  روش دوم بر اساس  f57 توالی استوار است. ویژگی این آزمون ها با تجزیه و تحلیل 190 نمونه مایکوباکتریال مورد (74 map و 116 نمونه غیر map ) بررسی قرار گرفت.  تمام map ها سویه های مثبت بودند و همه گونه های غیر map  منفی بودند . رقت های باکتری map برای ارزیابی حساسیت روشها مورد استفاده قرار گرفت . ما به حساسیت 1 CFU در هر PCR برای هر دو روش دست یافتیم. علاوه بر این، یک برنامه شبیه ساز کامپیوتر  PCR  به منظور  بررسی ویژگی  IS900 آغازگر جدید مورد استفاده قرار گرفت . ترکیبی ازدو روش PCR برای شناسایی map موثر واقع شده  اما اعتبار طیف وسیعی از نمونه های بالینی هنوز باید بررسی شود .

کلیدواژه: پاراتوبرکلوزیس، PCR، IS900;، مایکوباکتریوم  اویوم، f57

مقدمه:

بیماری پاراتوبرکلوزیسیا Johne یک بیماری مزمن و علاج ناپذیر از حیوانات اهلی و وحشی (به خصوص نشخوارکنندگان ) است که از عفونت مایکوباکتریوم avium زیرگونه پاراتوبرکلوزیس( map ) ناشی میشود . لاغری ، کاهش تولید شیر ، ادما ، کم خونی ، ناباروری و در نهایت مرگ ، علائم غالب در مرحله آخر این بیماری است . 

رشد و متابولیسم  گیاه تحت تاثیر انواع محرک های زنده و غیر زنده ای قرار میگیرند که شامل حمله میکروارگانیسم ها و حشرات به خوبی تنش های نوری و محیطی هستند. چنین واکنش های  گیاهی متنوع، نیاز به یک سیستم ارتباطی دارند که از گروهی از پیام رسان های شیمیایی به نام هورمون استفاده میکنند. هورمون ها رشد و توسعه گیاه را از نظر کیفی ارتقا، مهار، و یا تغییر میدهند. این فرایند پیچیده، نیاز به سیگنال عبوری دارد که یک مسیر خاص اطلاعاتی را در سلول تعریف میکند که یک سیگنال داخلی و یا خارجی را به یک واکنش سلولی خاص ترجمه میکنند. خصوصیات جهش در مسیر واکنش هورمون نه تنها یک فرصت عالی برای درک عمل هورمون در توسعه و فیزیولوژی گیاهی فراهم می کند، بلکه همچنین کمک به تشریح ژنتیک مولکولی هورمون مسیرهای سیگنالینگ و پوشش ژن های مربوطه می کند. این مقاله سیگنالینگ هورمون گیاهی و جهش های درگیر در مسیرهای سیگنالینگ را به طور کلی، معرفی  کرده و پیشرفت های اخیر در ژنتیک مولکولی سیگنالینگ اسید ژاسمونیک بررسی می کند.

کلیدواژه: هورمون های گیاهی، سیگنال دهی ژاسمونیک، فراخوانی، گیرنده هورمون، جهش های هورمون 

ژاسموناتها ، یک رده رو به رشد از مولکولهای علامت دهنده مشتق شده از چربی  با عملکردهای مختلفی اعم از آغاز واکنش های تنشی زنده و غیر زنده  به  تنظیم رشد و توسعه  گیاه می باشند. بیوسنتز ژاسموناتها ،از اسید های چرب اشباع نشده ای در غشای کلروپلاست منشا میگیرد. در اولین واکنش مولکولی کاتالیز شده ی ایپوکسیژناز، اکسیژن به منظور عملکرد مشتقات هیدروپروکسی وارد میشود. این هیدروپروکسید های اسید چرب، توسط سنتز آلن اکسید و آلن اکسید سیکلاز به اسید اکسوفیتودینوییک 12 (OPDA) و دینور OPDA (حد واسط های چرخه مسیر) تبدیل میشود. در مرحله بعدی، مشخصه ساختار حلقوی سیکلوپنتان ژاسموناتها توسط OPDA ردوکتاز تاسیس میگردد. تا همین اواخر، اسید ژاسمونیک به عنوان محصول نهایی از مسیر و به عنوان هورمون فعال زیستی بررسی شده است. این مسئله کاملا واضح است، با این حال، فعالیت بیولوژیکی برای تغییر بین متابولیسم های متفاوت اسید ژاسمونیک گسترش میابد و بخوبی فرایند بیوسنتز ترکیب میشود. همچنین روشن است که اسیدهای چرب اکسیژن دار برای انواع گسترده ای از ترکیبات فعال زیستی از جمله، ژاسمونات ها، افزایش میابند اما فقط محدود به این نیست.بررسی های اخیر در ساختار، عملکرد و تنظیم آنزیم های دخیل در بیوسنتز ژاسمونات، کمک به توضیح چگونگی تولید این تنوع می کند در حالی که ویژگی حفظ میشود.

کلیدواژه: سیکلاز اکسید الن، سنتز اکسید الن، ساختار بلور، CYP74، بیوسنتز جاسمونات، اکسی لیپین، آنزیم کاهنده اکسوفیتودنوات، اختصاصی بودن زیرلایه

روش تولید سریع  پلیمری، تجدید پذیر و پوشیده شده با سطح الکترودی پیشنهاد می شود که در حالت الکترو پلیمریزاسیون مونومری که به صورت خمیر الکترود کربن تغییر یافته قرار می گیرد. یک خمیر الکترود کربن توسط 1- نفتیلامینی که برای نشان دادن این راهکار مورد استفاده قرار میگیرد تغییر شکل میدهد. سپس یونهای Ni(II) با غوطه ور شدن الکترود تغییر یافته در یک محلول یونی 0.1 مول Ni(II) ترکیب میشوند. خصوصیات الکتروشیمیایی این الکترود تغییر شکل یافته ، رفتار اکسایش – کاهش  پایداری را در جفت های Ni(III)/Ni(II)  حتی پس از 500 چرخه ی پتانسیلی نشان میدهد. همچنین، آزمایش های  ولتا مترهای چرخشی و کرنو آمپر متریک نشان میدهد که گلوگز اکسید شده در سطح این نیکل توزیع پلیمری پیدا می کند و به الکترود کربن می چسبد.الکترود بطور موفقیت آمیزی در اکسیداسیون الکتروکاتالیتیک کربوهیدرات های گوناگون دیگر استفاده شد. در نهایت ، جریان اوج اکسیداسیون الکتروکاتالیک تمامی کربوهیدرات های آزمایش شده غلظتی بصورت خطی دارند که مقدار آنها را به راحتی می توان بدست اورد.

کلیدواژه: خمیر الکترود کربنی، 1-نافتیلامین، کربوهیدرات، الکترو پلیمریزاسیون، ولتا متری چرخشی

مقدمه:

تحقیقات اخیر نشان داده که پوشش سطح الکترودها با غشاهای پلیمری ،راهکارجالبی برای افزایش توان و میدان الکترود های تغییر یافته ی الکتروشیمیایی میباشد.(4-1).پلیمر هایی چون: پلی پیرول ،پلی تیوفن  و پلی آنیلین در تبدیل الکتروشیمیایی الکترودها به کار برده شده اند.(9-5).این رده بندی جدید مواد الکترودی برای بهبود میزان حساسیت و گزینش الکترود و برای کاهش اثرات رسوب در بسیاری از کاربردها ایجاد شده است.(11و10).

اين مطالعه شامل  تحقيق اثر بستر ريشه زايي بعلاوه هورمون ايندول بوتيريک اسيد در توسعه ريشه قلمه ساقه از کرومولانا ادوروتا است. قلمه ساقه C. odorata تيمار شده با مقادير مساوي از هورمونIBA  (7/0 %)  در 1 کيلوگرم از ورميکوليت، پرليت ، خاک مخصوص کاشت، ماسه و مخلوط مساوي از تمام بسترهاي کشت پرورش داده شدند.

مجموعه با اندازه مساوي با آب و کود آلي تحت تيمار قرار گرفتند. تيمار شاهد با مخلوطي از بسترهاي ريشه زايي مختلف بدون  IBAتهيه شد. داده هاي توسعه شاخساره براي مدت 6هفته يادداشت شدند  و طول ريشه در روز برداشت اندازه گيري شد. پارامترهاي اندازه گيري شده از نظر آماري آماري با استفاده از ANOVA مورد تجزيه و تحليل قرار گرفت و مشخص شد که طول ريشه و ساقه در سطح 0.05 در تمام بسترهاي ريشه زايي معني دار بود و بيشترين درصد توسعه به ترتيب ( 49 و 51 ٪ ) براي ريشه و ساقه بود که در بسترهاي ريشه زايي  که مقادير مساوي از هر يک از ترکيبات را داشتند (به عنوان مثال ترکيبات مخلوط شده ) مشاهده شد.  

در ميان بسترهاي کشت، سرعت جوانه زني به ترتيب 100 ، 70، 60 ، 50 و 40 درصد براي ترکيب مخلوط، ماسه، خاک مخصوص کاشت و ورميکوليت، پرليت و شاهد بود. بخش هاي مختلف ساقه بالغ آزمايش شده با هورمون IBA در نمو ريشه و ساقه آنها معني دار نبود و اگر چه ساقه هاي قلمه هاي پاييني تمايل به بلوغ سريع تر از قلمه هاي بخش بالايي داشتند. اين بنابراين بدان معني است که تکثير C. odorata توسط قلمه هاي ساقه را مي توان به طور بهينه از طريق ترکيبي از 0.7 ٪  IBA در مجموعه اي از بسترهاي مختلف ريشه زايي به دست آورد.

واژه هاي کليدي: کرومولانا ادوروتا، ايندول بوتيريک اسيد، تشکيل ريشه،  بسترهاي ريشه زايي.  

بر خلاف سلولهای حیوانی، سلولهای گیاهی، توسط دیواره سلولی نسبتا نازک ، اما از نظر مکانیکی قوی احاطه شده است. این دیواره متشکل از مخلوطی از پلی ساکارید ها و پلیمر های دیگر است که توسط سلول ترشح می شوند و به یک شبکه سازمان یافته با هم، توسط دو پیوند کووالانسی و غیر کووالانسی متصل اتصال می شود. دیواره های سلول گیاهی نیز حاوی پروتئین های ساختاری، آنزیم ها، پلیمرهای فنولیک، و مواد دیگر است که ویژگی های فیزیکی و شیمیایی دیواره را تغییر میدهد. دیواره های سلول پروکاریوت ها، قارچ ها، جلبک ها، و گیاهان متمایز از یکدیگر در ترکیب شیمیایی و ساختار میکروسکوپی هستند، با این حال همه آنها در دو عملکرد اولیه مشترک ارائه میشود: تنظیم حجم سلول و تعیین شکل سلول. همانطور که خواهیم دید، دیواره های سلول گیاهی عملکردهای اضافی را به دست میآورد که در دیواره های  دیگر ارگانیسمها آشکار نیست. بخاطر این عملکردهای مختلف و گوناگون، ساختار و ترکیب دیواره سلولی گیاه پیچیده و متغیر است. علاوه بر این عملکرد های بیولوژیک، دیواره سلولی گیاه در اقتصاد بشر اهمیت دارد. به عنوان یک محصول طبیعی، دیواره سلولی گیاه، ازنظر تجاری در شکل کاغذ، منسوجات، الیاف (پنبه، کتان، کنف، و دیگر)، زغال چوب، چوب، و دیگر محصولات چوبی مورد استفاده قرار میگیرد. یکی دیگر از کاربرد های عمده ای از دیواره های سلول گیاهی ، در پلی ساکاریدهای استخراج شده است که برای تولید پلاستیک ها، جلد ها، پوشش ها، چسب ها، ژل ها، و قوام دهنده ها  در انواع بسیار متنوعی از محصولات تغییر یافته اند. به عنوان فراوان ترین مخزن کربن آلی در طبیعت، دیواره سلولی گیاهی در فرآیندهای جریان کربن در اکوسیستم زمان میبرد. مواد آلی که تشکیل دهنده هوموس در خاک هستند که موجب افزایش ساختار و باروری خاک از دیواره های سلولی مشتق شده است. در نهایت، به عنوان یک منبع مهم علوفه در رژیم غذایی ما، دیواره سلولی گیاه ،عامل مهمی در تغذیه و سلامت انسان است. این فصل را با شرحی از ساختار و ترکیب دیواره سلولی و مکانیسم بیوسنتز و ترشح مواد دیواره سلولی شروع میکنیم. سپس به نقش دیواره سلولی اولیه در گسترش سلول برمیگردیم.

پروتئین های اتصال اسیدچرب به عنوان حاملان انتقال اسیدهای چرب محسوب می شوند و نقش مهمی در توسعۀ و ایجاد ویژگی های چاقی ایفا می کند. پروتئین متصل به اسیدچرب (پیه دار).پیه دار (A - FABP) یکی از اعضای این خانواده است. در مطالعۀ حاضر به تحلیل و بررسی شاخصۀ بیان بافت FABP جوجه و اختلاف بیان آن بین نرهای لاغر و چاق در بافت چرب شکمی پرداخته می شود، بدین ترتیب رابطۀ احتمالی بین بیان A – FABP و رشدونمو بافت چرب شکمی در جوجه آشکار گردد. اولاً، پروتئین فیوژن گلوتاتیون 6 – ترانس فراز / A - FABP القا و خالص سازی شد و در نتیجه آنتی سرم حاوی آنتی بادی های پلی کلونال اختصاصی با کمک ایمن سازی عادات مادۀ سالم با استفاد از پروتئین فیوژن خالص سازی شده حاصل شد. دوماً، شاخصه و ویژگی بیان بافت A - FABP با کمک لکۀ وسترن بررسی شد. درنهایت، اختلاف بیان A - AFBP در بافت چرب شکمی بین نرهای چاق و لاغر به کمک روش های لکه گیری وسترن و real time transcription بررسی شد. نتایج نشان داد که A - AFBP در بافت چرب شکمی به طور خاص و قابل توجه بیان می شود و سطح بیان mRNA هفته 2، 3، 4، 6، 7 و 10 جوجه ها (P < 0/05) و سطح بیان پروتئین جوجه های نر چاق از جوجه های نر لاغر در سن 6 و 10 هفتگی (P < 0/05) کمتر بود. این نتایج حاکی از آن بود که A - AFBP جوجه می تواند با تغییر سطح بیان و آن بر رسوب چربی شکمی تأثیر بگذارد و مکانیسم احتمالی این گونه خواهد بود که سطح بیان بالای A - AFBP سرعت بالای لیپولیتی را القا می کند و بر همین اساس منجر به کاهش توسط چربی شکمی می گردد.

کلید واژه: پروتئین متصل به اسیدچرب پیه دار، شاخصۀ بیان، اختلاف بیان ، نرهای چاق و لاغر

اطلاعات محدودی درباره تاثیر و لزوم اسیدهای چرب خاص برای گوساله های شیرده وجود دارد. رژیم غذایی آغازی که شامل ذرت و آرد دانه سویا است، در ایالات متحده معمول می باشد، مقدار  C18:3 آن کم است و نسبت C18:2 به  C18:3 با توجه به مقدار توصیه شده آن برای نوزادان انسانها تقریبا زیاد است.علاوه براین، دیگراسیدهای چرب کاربردی (C20:4، C20:5  و  C20:6) که از C18:2 و  C18:3 گرفته شده، فوایدشان برای گونه های یک معده ای ثابت گردیده است. بنابراین در مورد تاثیر افزودن نمک کلسیم از روغن کتان ( که مقدار  C18:3 آن بالا است ) یا روغن ماهی ( که مقدار C20:4، C20:5  و  C20:6 آن بالا است ) به رژیم غذایی آغازکننده گوساله هایی که کمتر از 3 ماهه سن دارند، تحقیق شده است. در تحقیق 1، 48 گوساله ی نر Holstein ( به وزن1.4 32.2± کیلوگرم ) که 2 تا 3 روزه بودند با 1 تا 4 رژیم درمانی آغازی تغذیه شدند که حاوی :

•بدون روغن ماهی یا کتان

•0.125 درصد نمک کلسیم از روغن کتان

•0.250 درصد نمک کلسیم از روغن کتان 

•0.25 درصد نمک کلسیم از روغن ماهی

پیش غذا یا آب به صورت اختیاری به گوساله داده می شود. در طول 56 روز اول، گوساله ها به صورت انفرادی در آغل نگه داری می شدند. از آغاز تا روز بیست و هشتم به گوساله 26 درصد پروتئین خام و شیر 17 درصد چربی دار جایگزینی داده می شد.

شکل فيزيکي علوفه ممکن است به رشد سيرابي کمک کند که اين خود ممکن است باعث افزايش وزن بدن، کاهش مواد موجود (DM) يا مصرف غذا، هضم غذا، و در نتيجه باعث سلامت لبنياتي گوساله شود. هدف اين تحقيق بررسي دو شکل متفاوت مصرف علوفه توسط روي رفتار، قابليت هضم ظاهري، و رفتار تغذيه اي گوساله هاي جوان شود. 20 گوساله ي نر هولستين(46. 8}1. 2kg) به صورت تصادفی علامت گذاري شدنداز بدو تولد با يکي از دو روش تغذيه اي در جايي که آنها را در معرض يک جيره غذايي پيچيده قرار مي دهند (بر اساسيک مبناي DM) 90% تغليظ پودر آغازي و هر يک از اين دو تا (1) 10% به صورت درشت تکه شده (3-4cm)  يونجه (CRS؛  n=10( يا (2) 10% زمين عالي (2 mm) علف يونجه (FN؛   n=10). به همه گوساله ها 8 ليتر شير جايگزين (MR؛  1. 2 KG از DM) از بدو تولد؛ مقدار MR به طور پيشرونده کاهش پيدا کرد بعد از WK براي قادر ساختن از شير گرفتن با اتمام هفته هفتم. مطالعه و بررسي تمام شد بعد از هفته هشتم. مصرف جيره مخلوط، MR، و آب روزانه کاهش پيدا کرد، و گوساله ها اضافه وزن پيدا کردند دو بار در عرض يک هفته. نمونه هاي غذا و پس مانده هاي آن در عرض هفته هفتم و هشتم براي بررسي محتواي تغذيه. 

مصرف جيره مخلوط، MR ، و آب به صورت روزانه گزارش شد و گاوها دو بار در هفته وزن مي شوند. نمونه هاي غذا و پس مانده هاي غذايي در هفته 7 و 8 براي ارزيابي هاي محتوي غذايي جمع آوري شدند. داده هاي رفتاري براي هر گاو براي مدت دو ساعت در طول هفته 6 و 8ام براي يک ارزيابي کلي هر حيوان 28 ساعت در هفته مورد ارزيابي قرار گرفت. کليه فضولات در طول هفته 8ام براي تعيين قابليت هضم جمع آوري شدند. گاو ها تغذيه شده با CRS در واقع DM  بيشتري نسبت به انوع  FNدارند. 

تنظيم خواب در جوانه هاي رويشي يك پروسه بسيارپيچيده است كه براي بقاي گياه و تمايزومعماري آن ضروري مي باشد. اطلاعات ما و توانايي دستكاري در اين پروسه ها به طورقطع به افزايش محصول و به دست آوردن مقدار بيشترغذاي جهاني منجر خواهد شد. درخيلي ازموارد رها شدن نتايج خواب درافزايش تقسيم سلولي و تغيير برنامه هاي تمايزموثر بوده است.ولي به طورقطعاین وقایع را باید در اثربرهمكنش بين سيگنال ها مربوط بدانيم. سيگنال هاي دروني مثل هرمون ها و قندها و همچنين عوامل خارجي به خصوص نور نيز دراين باره موثرهستند . همچنين هم پوشاني سيگنال ها باعث الحاق راه هاي تنظيمي در اندو و اكتو و پارا دورمانسي شده اند.

مقدمه: 

 دانستن مكانيسم هاي كنترلي رشد در گياهان و نحوه تنظيم خواب آن به طور قطع در حل مشكلات كشاورزي موثرخواهد بود مخصوصا برارزش و قيمت محصولات در گياهان چند ساله موثرخواهد بود. همچنين درزمينه ذخيره و پخش گياهان غده اي نظير سيب زميني ، كاساوا و پياز نيز موفقيت هايي در این رابطه  به دست آمده است . يافته هاي اخير درمورد فعاليت هرمون ها و نقش به طور قطع آنها در فعاليت هاي فيزيولوژيكي از جمله تقسيم سلولي  كه بر پايه اطلاعات ژنتيك به دست آمدند دريچه هاي جديدي براي به دست آوردن اطلاعات در مورد خواب باز خواهد كرد.

تکنیک ISSR، یک روش مبتنی بر PCRاست که شامل تکثیر یک قطعه DNA حاضر در فاصله تکثیر پذیر میان دو ناحیه تکراری ریز ماهواره منحصر به فرد با جهات مخالف می باشد. این تکنیک، معمولا از میکروساتلیت‌ها (ریزماهواره‌های) با طول16-25 bp، بعنوان پرایمر یک واکنش تک پرایمری که لوکوس‌های چندگانه ژنومی را برای تکثیر توالی های بین ریزماهواره‌ای با اندازه‌های مختلف، هدف می‌گیرد بهره می برد. تکرارهای ریزماهواره مورد استفاده بعنوان پرایمر، می توانند دو، سه، چهار یا پنج نوکلئوتیدی باشند. پرایمرهای مورد استفاده می توانند به هر نقطه ای از DNA متصل شوند اگرچه معمولا در انتهای 3’ یا 5’خود به یک تا چهار باز متصل بوده و براساس آنها، گسترش می یابند (شکل 1). 

مقدمه

این تکنیک بیشتر مزایایAFLP و ریزماهواره را با جامعیت رپید ترکیب کرده است. تکرارپذیری بالایISSRs احتمالا به سبب استفاده از پرایمرهای طولانی تر (16–25 mers) در مقایسه با پرایمرهای کوتاهتر رپید (10- mers) می باشد که این امر امکان استفاده از دمای بالای اتصال(45 الی 60 درجه سانتیگراد) را فراهم می کند که منجر به افزایش احتمال اتصال پرایمر به نقاط مشخصی از DNA (تکرار پذیری بیشتر) می شود. مطالعات در مورد تکرار پذیری نشان می دهد که تنها ضعیف ترین باندها تکرار پذیر نیستند. در حدود 95-92 درصد قطعات امتیاز داده شده می توانند در طول نمونه های DNA رقم و در طول دوره های مجزای PCR تکرار شوند وقتی با استفاده از پلی اکریل آمید شناسایی شدند.10 نانوگرم DNA الگو، همان محصولات تکثیری را که 25 و یا50 نانوگرمDNA الگو در هر 20 میکرولیتر PCR تولید می کنند، تولید خواهد کرد. دمای اتصال به درصد پرایمر مورد استفاده بستگی دارد و معمولا از 45 تا 65 درجه سانتیگراد است.

دلایل متابولیکی حساسیت متفاوت گونه های گیاهان C3 و C4 به تنش کم آبی قابل درک نمی باشد. در این مطالعه، گیاهان 15 روزه گندم و ذرت، نماینگر بترتیب گیاهان C3 و C4، تحت تاثیر سطوح القای تنش آبی، کم (mpa 0.4-)، متوسط (mpa 0.8-) و زیاد (mpa 1.5-) بوسیله PEG-6000 برای 7 روز تحت شرایط کنترل شده قرار گرفتند. ریشه‌ها و برگهای این گونه گیاهان برای ارزیابی خسارت اکسیداتیو و اکسیدانت همراه با خسارت تنش (بعنوان کمبود الکترولیت)، مقدار آب و اسید آبسزیک تعیین شدند. در موقع تنش کم، در هر دو گونه گیاهی اختلاف معنی دار زیادی از همدیگر برای خسارت تنش ایجاد نشده است. در سطح متوسط و زیاد بطور قابل ملاحظه سبب خسارت زیاد گندم در مقایسه ذرت شد. این همراه با زیان بیشتر نسبت آب و کلروفیل در گندم و سطوح این تنش در ذرت می شود. مقدار ABA باقیمانده در سطح متوسط تنش در هر دو گونه گیاهی تاثیری نداشته اما افزایش قابل توجهی در ریشه‌ها و برگ های ذرت نسبت به گندم در سطح متوسط نشان داد. خسارت اکسیداتیو در سطوح تنش متوسط و زیاد مقدار مالوندی آلدهید و H2O2 بطور محسوس در گندم نسبت به ذرت افزایش داشت. تقریبا، ذرت مقدار قابل توجهی آنتی اکسیدانت غیر آنزیمی (اسید آسکوربیک و گلوتاتیون) و آنزیمی (آسکوربیک پروکسیداز، دی هیدروآسکوربات ریداکتاز و گلوتاتیون ریداکتاز، خصوصا در برگ‌ها ) دارد. در مقابل گندم دارای فعالیت بیشتر کاتالیز در ریشه‌ها و نیز برگ‌ها در مقایسه با ذرت می باشد. فعالیت سوپراکسید دیسماتاز نشان داد که تفاوت کمی بین گونه گیاهی بوده است. آزمایش برگ های هر دو گونه گیاهی خسارت بیشتری نسبت به ریشه‌ها دیده‌اند. این یافته‌ها اظهار کردند که حساسیت متفاوتی در گیاهان C3 و C4 نسبت به تنش کم دارند و نفوذ ناقصی برای توانایی مقابله با تنش اکسیداتیو، شامل اسید آسکوربیک و گلوتاتیون می باشد. 

کلمات کلیدی: اسید آسکوبیک، آسکوربیک پرواکسیداز، کاتالیز، تنش خشکی، گلوتاتیون، ذرت، گندم

مقدمه

تنش کمبود آبی تاثیر زیادی در سیستم اکولوژیکی و کشاورزی می گذارد(روکفورت و ودوارد 1992). کارایی اکوسیستم می تواند اصلاح ناشی از تغییر در فراوانی نسبی گروههای اساسی گیاهی (بعنوان مثال C3 و C4) در سیستم طبیعی شود(اپستین و همکاران 1998). علاوه بر این، پتانسیل تولید گیاهان C3 (برای مثال گندم) یا C4 (بعنوان مثال ذرت) کاهش زیادی ناشی از خشکی های مکرر که سبب کاهش مشخص عملکرد می شود(جاوس و پریرا 1992).

تغییر به طور بالقوه منجر به این می شود که یک فرد جدید در یک تیم کاری انتخاب شود. این مطالعه درباره اعتماد بخصوصی که اعضای تیم به فرآیندهای پذيرش و انتخاب سازمانشان می کنند، تحقیق کرده است. و این را به ریسک دریافت شده از کارکنان جدید ربط داده است. این تحقیق توسط تیم هایی که درقسمت برداشت محصول جنگل کار می کردند هدایت شد، شغلی که تغییرات زیاد، ریسک بالا و نرخ سانحه  بالایی دارد. نتایج نشان می دهد که اعتماد به فرآیندهای پذيرش، همبستگی منفی با ریسک حاصل از یک کارمند جدید دارد. اعضای تیم همچنین تعدادی از رفتارهای تضمینی (مواظبتي) و مطمئن را هنگامی که یک شخص جدید به تیم ملحق می شد، عهده دار شدند و این ها به سطح ریسک دریافت شده و این که چقدر آن ها به سلامت اعضای تیمشان اهمیت می دهند، مربوط می شد. این گونه بحث می شود که اعتماد خاص به ویژگی های تضمینی فرایند پذيرش و انتخاب یک سازمان، ممکن است عواقب منفی را برای سلامتی داشته باشد. 

کلیدواژه : امنیت، اعتماد، تغییر، انتخاب،پذيرش(ورود)  

تعدادی ازمطالعات یک رابطه بین سوانح و تغییر کارمند را گزارش کرده اند (&Bell  Grushecky2006٫ ;Kincaid٫ 1996). علاوه بر این، بی ثباتی تیم که ناشی از غیبت می باشد با حوادث ناشی از کار مرتبط شده است (Goodman & Garber 1988 ). یک تفسیر احتمالی از این روابط این است که کارمندان جدید (آنهایی که جایگزین پرسنل تعویض شده می شوند یا جای غائبین را پر می کنند) خطر امنیت را مطرح می کنند. اگراعضای تیم اطمینان داشته باشند که سازمان آنها با انتخاب کارمند جدیدی که به طور ايمن کار کند، به تغییر و غیبت رسیدگی خواهد کرد احساس خطر آنها می تواند کاهش یابد.

باکتری خوار( bacteriophage ) که مختصرا آن را phage می نامیم، ویروسی می باشد که به آلوده کردن باکتری و تکثیر درون ان می پردازد. منشاء لغوی آن کلمه bacteria و کلمه یونانی phagein که به معنی بلعیدن می باشد. باکتری خوارها متشکل از پروتئین هایی می باشند که ژنوم DNA  یا RNA  را احاطه می کنند، و می توانند شامل ساختارهاینسبتا ساده و یا پیچیده باشند. ژنوم ان ها می تواند به رمزگذاری حداقل 4 ژن  و حداکثر بیش از صدها ژن بپردازد. باکتری خوار به دنبال تزریق ژنوم خود درون سیتوپلاسم، درون باکتری تکثیر می شود. باکتری خوارها به عنوان رایج ترین و متنوع ترین موجودات در زیرست کره می باشند.

باکتری خوارها به طور وسیعی در محل هایی توزیع می گردند که میزبان های باکتری در آنجا قرار دارند همانند خاک یا روده حیوانات. یکی از متراکم ترین منبع طبیعی باکتری خوارها و ویروش های دیگر آب دریا می باشد، به صورتی که بیش از 9×10 ویریون (ویروس آلوده) در هر میلیمتر در کف حصیرهای میکروبی سطوح وجود دارد، و بیش از 70% از باکتری آبی توسط باکتری خوارها آلوده شده اند. آن ها بیش از 90 سال به عنوان گزینه ای برای انتی بیوتیک ها در شوروی سابق و اروپای شرقی ، همچنین فرانسه مورد استفاده قرار گرفته اند. آن ها به عنوان روش درمان موثری در برابر تغییرات مقاومتی بسیاری از باکتری ها به جای چندین دارو مورد استفاده می باشند.

اشتریشیا کُلی (E.coli) در درون سلول های کوچک خود حاوی تمام اطلاعات ژنتیکی مورد نیاز برای فرایند، متابولیسم ، رشد و بازتولید می باشد. آن می تواند به سنتز تمام ملکول های مورد نیاز ارگانیکی خود از گلوکز گرفته تا یون های غیرآلی بپردازد.

بسیاری از ژن ها در اشتریشیا کُلی (E.coli) با حداکثر توان خود فعالیت می کنند یعنی اینکه آن ها همیشه فعال می باشند و ژن های دیگر زمانی فعال می شوند که مورد نیاز سلول ها باشند به این ترتیب ظاهر آن ها می بایست کنترل شده باشد.

 دو نمونه : 

- اگر آمینو اسید تریپتوفان (Trp) به مواد مورد کشت اضافه شود باکتری ها فورا تولید 5 آنزیمی که قبلا برای ترکیب Trp و عناصر میانجی در طی تنفس گلوکز به کار می رفتند متوقف می کند. در چنین مواردی حضور فعالیت های انزیمی منجر به کاهش ساخت آنزیم ها می گردند.

- بلعکس، اضافه کردن لایه جدید به مواد کشت شده موجب تحریک شکل گیری آنزیم جدید برای متابولیزه کردن آن لایه ها خواهد شد. اگر ما مجموعه ای از باکتری های کشت شده   را که از گلوکز تغذیه می کنند برداریم و تعدادی از سلول ها را به لاکتوز اضافه کنیم ، مجموعه ای از توالی اتفاق می افتد.

در ابتدا سلول ها ساکن می شوند. آن ها موجب متابولیزه شدن لاکتوز نمی گردند و فعالیت های متابولیکی دیگر کاهش یافته و تقسیم سلولی متوقف می گردد.

به هر حال به زودی کشت باکتری با مصرف سریع لاکتوز شروع می شود. در این صورت چه اتفاقاتی می افتد ؟ در فاصله زمانی که وقفه ایجاد می شود ، سلول ها شروع به تولید 3 آنزیم می کنند که قبلا آن ها را تولید نمی کردند.

این مقاله به بررسی مقاومت انگلی به نام ( تترانیچوس سینابارینوس) در برابر آفت کش ها و مطالعه بر روی ژنتیک و مدیریت مقاوت در برابر آفت کش ها می پردازد. این انگل درکشور چین حداقل  در برابر 25 نوع آفت کش از خود مقاومت نشان داده است. این انگل در ابتدا در برابر آفت کش های پاراسیون و دمتون از خود مقاوت نشان داد. در اوایل سال 1962 سطح مقاومت در برابر آفت کش دمتون در انگل سینابارینوس به 62 برابر رسید. ژن های مقاومتی اومسوات و مونوکروتوفوس در این انگل توسط یک ژن غالب کنترل می شود بنابراین میزان مقاومت سرعت بیشتری می یابد. زمان مربوط به رشد و پارامترهای دیگری در رابطه با زندگی این انگل زمانی که این انگل در برابر آفت کش ها از خود مفاومت نشان می دهد تغییر می کند. چرخه زندگی کوتاه تر شده و میزان مولد های آن بیشتر می گردد. این دلیل دیگری برای افزایش میزان مقاومت این انگل در برابر آفت کش ها می باشد. مقاومت انگل در برابر این آفت کش ها توسط استفاده چرخشی از این آفت کش ها، کنترل بیولوژیکی و روش های دیگرتوسط افراد مدیریت می شود.

مقدمه:

بیش از 130 گونه از انگل ها در کشور چین شناخته شده است.انگل سینابارینوس یکی از مخربترین گونه ها در زمینه محصولات کشاورزی می باشد. برای سال های زیادی کنترل این انگل ها در کشور چین از طریق اسپری های آفت کش انجام می شده است. از سال 1980 سطح مقاومت این انگل در برابر آفت کش ها به سرعت افزایش یافته است . در نتیجه تاثیر این نوع آفت کش ها کمتر شده و هزینه های مربوط به کنترل شیمیایی بالا رفته است. 

به دلیل تنوع زیاد شکل های مختلف حشرات، آناتومی مربوط به این گونه موارد تنها یک گونه اصلی را شامل می گردد. در هر یک از دسته ها و خانواده ها، نمونه مورد نظر ما شامل انواع بیشماری از گونه های مختلف می شود که باعث از بین رفتن ابهامات در مورد طرح های مختلف حشرات می گردد. نگاه دقیق تر، طرح مبنای مشابهی را در تمام حشرات و حداقل در گونه های بالغ تر آن ها آشکار می کند. در بخش زیر بخش های اصلی مربوط به بدن حشرات توصیف می گردد.

زمانی که به بررسی این گونه موارد پرداخته اید به سوالات چهارگزینه ای مورد نظر پاسخ دهید ؟

بدن حشرات شامل یک اسکلت سخت تری می باشد که بخش های نرم تر داخلی را تحت حفاظت قرار می دهد. آن شامل سه بخش اصلی می باشد (سر، قفسه سینه، شکم) که هر یک از این ها شامل چندین بخش کوچکتر می گردند. 

 پوست :

یکی از بخش های شگفت انگیز مربوط به حشرات شامل ترکیبی از انعطاف پذیری و قدرت پوششی آن ها می باشد ( یعنی بخشی از حشرات که باعث ایجاد پوسته سخت آن ها می گردد) که امکان آزادی حرکت را برای حشرات بدون از بین رفتن قدرت دفاعی آن ها ایجاد می کند.

اکسایش گلیکول در گلیوکسیل، مرحله ی واکنشی مهمی در تنفس نوری می باشد. گیاهان زمینی و خزه ی سبز کاروفیسین، گلیکول موجود در پراکسیسم را با استفاده از اکسیژن به عنوان عامل مشترک با اکسیژن ترکیب می کنند، در حالیکه  خزه ی سبز کاروفیسین  از دی هیدروناژ گلیکول میتوکندری (GDH) به همراه عوامل مشترک آلی استفاده می کند. تحلیل های قبلی وجود GDH را در میتوکندری آرابیدوپسیس تالیانا نشان دادند (AtGDH). در این بررسی، سهم AtGDH در تنفس نوری مشخص شده است. هر دو فعالیت GDH میتوکندری و فراوانی RNA تحت شرایط رشد تنفس نوری تنظیم شده اند. آزمایش ها نشان دادند که اکسایش گلیکول در استخراج های میتوکندری برای انتشار CO2 ترکیب می شود. این اثر می تواند با افزودن فاکتورهای موثر در بیماری برای آمینوترانسفراز تقویت یابد ولی با افزودن گلیسین جلوگیری می شود. رشته های الحاقی T-DNA برای AtGDH ، کاهش چشمگیری را در فعالیت GDH میتوکندری و انتشار CO2 از گلیکول نشان می دهند. بعلاوه، تنفس نوری در این رشته های جهش یافته در مقایسه با نوع مونه وحشی کاهش می یابد که با تعیین شکافت CO2 و نسبت گلیسین/سرین تحت شرایط رشد تنفس نوری پخش می شود. داده ها نشان می دهند که اکسایش گلیکول میتوکندری سهمی در تنفس نوری در گیاهان بلند دارد.  این مورد نشان دهنده حفظ تنفس نوری کلروفیسین در استرپتوفیت، با وجود تکامل پراکسیسم نوع برگی می باشد

کلیدواژه: دی هیدروناژ گلیکول، تنفس نوری، تکامل گیاه، استرپتوفیت

مقدمه :

گیاهان زمینی، گروه مونوفیلیتی (تک ریشه ای) می باشند که از خزه های سبز بیرون می آیند. نزدیک ترین نسبت ها در گیاهان زمینی باقی مانده در خزه سبز کلروفیسین یافت می شوند. هر دو گونه اغلب تحت عبارت استرپتوفیت براساس هر دو شواهد مولکولی و یاخته شناسی رده بندی می شوند. یک ویژگی مهم مشترک بین استرپتوفیت ها وجود پراکسیسم نوع برگی حاوی GO به عنوان آنزیم کلیدی می باشد. 

تأثیر رقابت زود هنگام علف هرز  بر سر محصول ذرت پرورش یافته در Waikato تعیین شد. ذرت در سه محیط متفاوت پر از علف هرز (بدون علف کش)، grass weeds (علف کش پیش از ظهور) و علف های هرز برگ پهن (melolachlor  پیش از ظهور) قرار داده شد. علف های هرز بر جای مانده با نیکوسولفورون بعد از ظهور (g60 در هکتار) بعد از دوره های متفاوت رقابت کنترل شدند و علف های هرز موجود در گلدان ها يا ظروف در ادامه ازمایش برداشته شدند. علف های هرز که به مدت 4 هفته بعد از ظهور کاملاً بدون کنترل گذاشته بودند محصول خالص را به طور معني دار کاهش دادند. بعد از اینکه در علف کش بیش از ظهور استفاده شد، علف های هرز برجای مانده بعد از حدود 6 هفته با علف هایی که در مقایسه با علف های هرز برگ پهن تاثیر بیشتری داشتند. شروع به کاهش محصول ذرت کردند. دوره واقعی قبل از آغاز تاثیر علف های هرز بر رشد محصول و محصول ظاهراً با زمانی که علف های هرز برای موفقیت در پوشش کامل زمین صرف کرده بودند ارتباط داشت.

کلیدواژه: ذرت، رقابت، کنترل علف هرز، پوشش زمین، بعد از ظهور.

مقدمه: 

با وجود اینکه ذرت (zea mays) یک گیاه بلند و پر انرژی است اما در برابر رقابت علف های هرز آسیب پذیر است. و طبق گزارشات، خسارت بیش از ٪30 مواجه می شود. (Rah man, 1985). به همین خاطر، بسیاری از محققان رقابت علف هرز در این گروه را در اقدامی مدلسازی کرده اند تا آستانه و کاهش محصول را پیش بینی کنند (McDonald و 1999Riha؛ Ngouajio و دیگران 1999). با اینحال در منطقه Waikato که بانک بذر علف هرز بسیار فراوان است (Rah man و دیگران 1996)، نشان داده شده است که رقابت علف های هرز کنترل نشده منجر به کاهش 70 درصدی محصول می شود. (Rah man و James، 1994؛James و Rah man، 1992).

توازن و تعادل بین تفکیک و تکثیر سلولی از جنبه های مهم ارگانیسم های چند سلولی می باشد.  ما با استفاده از داده های بیان ریشۀ آرابیدوپسیس عامل رونویسی UPBEAT1(UPB1) را شناسایی کردیم که این توازن وتعادل را تنظیم میکند.  برش عمودی بیان گستردۀ ژنومی به همراه آنالیز ChIP-chip نشان داد که UPB1 بیان مجموعه ایی از پراکسیدازهایی که تعادل گونۀ اکسیژن واکنشی (ROS) بین منطقۀ تفکیک سلول و منطقۀ ازدیاد سلول در جایی که تفکیک شروع میشود را مدوله می کند،مستقیما تنظیم می کند.  توزیع فعالیت UPB1 ،تعادل ROS را دستخوش تغییر می کند، و باعث تأخیر آغاز تفکیک میشود.  مدولاسیون تعادل ROS و فعالیت پراکسیداز از طریق واکنشگرهای شیمیایی به روشی که با عملکرد UPB1 همخوانی دارد، بر آغاز تفکیک تأثیر میگذارد.  این مسیر جدا از نشانه دهی هورمون گیاهی اکسین و سیتوکینن عمل می کند.  مقایسه با کنترل رشد تنظیم شده با ROS در حیوانات نشان می دهد که یک مکانیسم مشابه درگیاهان و حیوانات وجود دارد. 

مقدمه:

رشد ارگانیسم های چندسلولی به حفظ تعادل کامل بین تقسیم و تفکیک سلول بستگی دارد.  قطع این تعادل در حیوانات باعث بیماری هایی چون سرطان می شود. در گیاهان به دلیل اینکه اندام ها دائما از سلول های ساقه بوجود می آیند، در نتیجه قطع این تعادل باعث توقف پیش از موعد رشد یا اندام زایی غیرعادی میشود. در ریشۀ آرابیدوپسیس، سلول ها از مرکز سلول ساقه در رأس نشأت می گیرند. دودمان این سلول های ساقه به سرعت در منطقۀ transit-amplifying به نام مریستم تقسیم می شوند.  بعد از آن دستخوش افزایش گستردۀ حجم سلول در منطقۀ ازدیاد طول میشوند. گذر از تکثیر سلولی به طویل شدگی، نشانگر مرحلۀ اولیۀ تفکیک است و در نقطۀ نسبتا متفاوت هر نوع سلول خ می دهد و یک مرز تقریبا دندانه دار و ناهموار در این منطقۀ گذر (TZ) ایجاد میشود. سلول ها وقتی کاملا طویل شدند، وارد منطقۀ بلوغ میشوند که در آنجا به انواع مختلف سلول تفکیک میشوند. مطالعات قبلی نشان داده است که رشد ریشه را با توجه به میزان تقسیم سلول در ناحیۀ مریستمی و میزان انبساط سلول در منطقۀ ازدیاد طول تعیین می کنند (Beemster و Baskin،1998). 

در اين مطالعه به تجمع 20 عنصر كم مقدار (Ag, Ba, Bi, Cd, Co, Cr, Cs, Cu, Ga, In,Mn, Mo, Pb, Rb, Sb, Sn, Sr, Ti, V, Zn) در ماهيچه هاي 5 گونۀ سگ ماهي (Acipenser guldenstaedti, A.  persicus, A.  nudiventris, A.  stellatus و Huso huso) جنوب درياي خزر پرداخته ميشود. علاوه بر اين، رابطۀ برخي ويژگي هاي بيولوژيكي و ميزان عناصر كم مقدار و همچنين روابط بين عنصري ارزيابي شد.  نمونه ها (10 نمونه از هر 5 گونه) از دو منطقۀ مهم صيد سگ ماهي در قسمت ايراني در سال 2002 گردآوري شد. غلظت عناصر با استفاده از ICPMS مشخص شد. فقط در مورد Cs تفاوت هاي قابل توجه بين دو منطقۀ نمونه گيري منتخب مشخص شد. تفاوت قابل توجهي در ميزان Co, Ga, Rb, Sn, Ti, Pb در ماهيچه گونه ها وجود داشت. تنها در مورد Cd تفاوت هاي بهم مرتبط وزن بين گونه ها مشاهده شد.  روابط وابسته به طول قابل توجه براي Ga و Ba مشاهده  شد. الگوهاي تجمع عناصر با روشهاي آماري ارزيابي شد و با ساير پژوهش مقايسه شد. در همۀ موارد،مقدار عناصر كم مقدار سمي (Cd, Cu, Pbو Zn) به طور قابل توجهي زير سرمشق هاي بين المللي براي مصرف انسان است. 

كليدواژه: درياي خزر،سگ ماهي(STURGEON)،عناصر كم مقدار

در طي چهل سال گذشته، بالاخص در دهۀ اخير ميزان آلاينده هاي (شامل فلزات سنگين،آفت كش ها،هيدروكربن هاي نفتي و. . . ) در درياي خزر افزايش يافته است و در نتيجه فشارهاي بشري بر اكوسيستم هاي دريايي و ساحل رشد فزاينده داشته است. از آنجا كه درياي خزر يك آبگير محصور است، زمان اقامت آلاينده ها نيز نسبتا طولاني است و اين يكي از دلايل افزايش الاينده است. به عبارت ديگر،از آنجا كه درياي خزر يك محدودۀ آبي مشترك است، فعاليت هاي يكي از كشورهاي ساحلي بر محيط زيست ساير كشورها نيز تأثير مي گذارد. آلودگي دراي خزر مسئله اي جدي است و يكي از اين آلودگي ها در دوران حكومت شوروي رخ داد. زباله ها و آلودگي حاصل از فعاليت هاي صنغتي و ميدان نفتي  در برخي مجلات وگزارشات گزارش شده است. درياي خزر غذا، آب، فرصت هاي صنعتي، گاز و نفت كشورها همسايۀ خود را تأمن مي كند. با توجه به نقش حياتي دراي خزر در زندگي ميلين ها انسان، آلودگي فزايندۀ آن در حال حاضر يكی از نگراني هاي عمدۀ محيط زيست شناسایی در سرتاسر دنيا و بويژه كشورهاي حاشيۀ درياچۀ خزر ميباشد.

توزیع طولانی مسافت مواد جذبی در گیاهان عالی در سیستم مجرای غربالی  مرکزی آوند آبکشی رخ می دهد.  عموما پذیرفته شده که جریان مواد جذبی توسط یک اختلاف فشار که به صورت اسمزی تولید می شود و حدود 80 سال قبل توسط Ernst Mu¨ nch  پشنهاد شد،  هدایت می گردد. در بین سال های 1960 و 1980،  بعد از اینکه تصاویر میکروسکوپ الکترونیی نشان داد که مجراهای غربالی دارای موانعی هستند که جریان منفعل را متوقف می کند،  فرضیۀ جریان فشار با چالش و بحث مواجه شد. این امر منجر به پیشنهاد مکانیسم های جابجایی گوناگون شد. بااینحال،  اکثر پژوهشگران به این نتیجه رسیدند که موانع موجود در مسیر مجرای غربالی به دلیل مصنوعات آماده سازی است. پشرفت های اخیر در زمینۀ تصویر برداری زیستی توانایی ما در مطالعۀ آوند آبکشی را به طور قابل توجهی بیشتر کرده است. دود از انتظار است که مطالعات بافت زنده فرضیۀ فشار-جریان را بار دیگر به چالش بکشاند. در این مطالعه،  ما بررسی های فعلی درمورد ساختار و نقش آوند آبکشی را به صورت خلاصه بیان خواهیم کرد و تأثیر آن بر آگاهی و درک ما از انتقال طولانی مسافت در آوند آبکشی را توضیح خواهیم داد. 

کلید واژه: آوند آبکشی، عناصر غربالی، انتقال طولانی مسافت، فرضیۀجریان فشار Mu¨ nch،  تصویربرداری با تفکیک بالا، فوریسوم ها،  اتاقک های رزوفر میکروسکوپ

تکامل گیاهان خاکی منجر به پیچیدگی و اندازۀ بیشتر تنۀ گیاه شد که این امر به نوبۀ خود تقاضا برای تلفیق طولانی مسافت و انتقال نشانه را افزایش داد. بافت های آوندی به دو سیستم ریزسیال کارآمد با وظایف گوناگون تکامل یافتند. گزیلم شبکه ایی از کانال هایی است که شامل سلول های مرده می شود و آب و مواد مغذی را طریق آپوپلاست انتقال می دهد.  به عبارت دیگر،  انتقال assimilate ها در آوند آبکشی رخ می دهد. آوند آبکشی بافتی است که دارای سلول های زنده به نام عناصر غربالی است. ردیف های بهم پیوسته و متوالی عناصر غربالی مجراهای غربالی را شکل می دهند که وظاف این مجراها توسط سلول های همراه و پارانشیمای آوند آبکشی حمایت می شود. مجراهای غربالی آوند آبکشی بر خلاف گزیلم مواد سیال را در سیمپلاسم جابجا می کنند. تعاملات سایش با اجزاء سلول،  مقاومت سیستم مجرای غربالی را تعیین می کنند و در نتیجه مشاهدۀ افزایش متوالی حذف اندامک  در عناصر غربالی در طی تکامل گیاهان خاکی عجیب نیست.

اسید یاسمونیک (JA1) و متیل استر فرار آن یعنی MeJA سیکلوپنتانون های مشتق شده از اسید چرب هستند که یوبیکیتوس در قلمرو گیاهی رخ می دهند. از زمان کشف یاسمونات ها(JAها) در گیاهان در حدود 40 سال پیش، درک ما از بیوسنتز و کارکرد فیزیولوژیکی این ترکیبات بواسطۀ پیشرفت های متعدد مشخص شده است.  

آزمایشات انجام شده در دهۀ 1980 مسیر بیوسنتتیک JA را مشخص کرد و نشان داد که اعمال خارجی JAها بر طیف وسیعی از فرآیندهای فیزیولوژیکی تأثیر می گذارد. کشف اوایل دهۀ 1990 در مورد عملکرد JAها به عنوان نشانه های قوی بیان بازدارنده های پروتوئیناز(PIs)  دفاعی باعث شد که توجه ها وعلایق به سمت نقش فعال هورمونیJA  ها در دفاع جلب شود. تحقیقات دهۀ گذشته منجر به پیشرفت های اساسی مانند شناسایی ژن های رمزگذار اکثر آنزیم های بیوسنتتیک JA و کشف JAهای بیولوژیکی فعال و جدید شده است. شناسایی مجموعۀ بزرگی از بیوسنتز JA و میوتانت های(mutant) پاسخ ابزار مهمی در ارزیابی نقشJAها در فرآینده های مربوط به دفاع و رشد گیاه در اختیار ما قرار داده اند. وقوع گستردۀ JAها در گیاهان و برخی یوکاریوت های lower (پست) و قابلیت آنها در تنظیم فرآیندهای فیزیولوژیکی در حیوانات(مثل حشرات) موید این نکته است که JAها از مزیت بیولوژیکی برخوردار هستند. 

متابولیسم اوگزیلیپین در گیاهان و حیوانات

یاسمونات ها به خانوادۀ مشتقات اسید چرب اکسیژنی که در مجموع اگزیلیپین گفته می شوند و از طریق متابولیسم اکسایشی اسیدهای چرب دارای حلقه های اشباع نشده(polyunsaturated) تولید می شوند. در حیوانات،  اعضای گروه ایکوزانوئید(C20) واسطه های لیپید از اسید آراچیدونیک سنتز می شوند و به عنوان تنظیم گر تمایز سلول،  پاسخ های ایمنی و همواستاسیز عمل می کنند. در گیاهان، ترکیبات اکسیژنی که عمدتا از  C18 α- لینولنیک اسید (18:3) مشتق میشوند، طیف گسترده ای از فرآینده های مربوط به دفاع و رشد را کنترل می کنند. استدلال بیوشیمیایی پیرامون سنتز اگزیلیپین ها هم در گیاهان و هم در حیوانات به طور قابل ملاحظه های شبیه به هم است (شکل 1). گونه های هر دو قلمرو از سیتوکروم P450،  لیپواکسیژناز(LOX) و سیکلواکسیژناز یا فعالیت های شبیه به سیکلواکسیژناز (مانند α-اکسیژناز گیاهی) برای اکسید کردن سوبسترههای اسید چرب دارای حلقه های اشباع نشده استفاده می کنند. 

ما جهش یافته های مریستم شاخۀ مسطح (fsm) درگیاه برنج را جدا کردیم که رشد ناقص جوانه رانشان دادند ودرمرحلۀ رویش خشک شدند.  از آنجائیکه اکثر گیاهان fsm  دارای مریستم (بخشینه) های راسی شاخۀ کوچک و مسطح بودند( SAMها) ،ما نشان خواهیم داد که FSM برای حفظ کامل SAM لازم است. FSM یک ارتولوگ مفروض FASCIATA1 آرابیدوپسیس (FAS1) را رمزگذاری میکند که با زیرواحد p150 عامل 1اجتماع کروماتین (CAF-1) مطابقت دارد. FSM به صورت تکه تکه در سلولهای با تقسیم فعالانه نمایان میشود که نشان دهندۀ ارتباط محکم  FSMبا مراحل چرخۀ سلول ویژه میباشد.  هدف مضاعف در محل هیبریدشدگی لکه دار با ژنهای نشانگر چرخۀ سلول نشان داد که FSM عمدتا در مرحلۀ G1 بیان میشود. در fsm، بیان دو ژن نشانگر که مراحل  S و G2 تا M را نشان میدهند، در SAM بهتر شد. علیرغم کاهش تعداد سلول ها در SAM، حاکی از آن است که مراحل S و G2 در fsm طولانی هستند. علاوه بر این، رویدادهای رشد در برگ های fsm  در زمان کامل رخ میدهد. این نشان میدهد که تنظیم موقتی رشد، جدا از دورۀ چرخۀ سلول رخ میدهد. بر خلاف فنوتیپ خط دار (fascinated) Arabidopsis fas1، فنوتیپ fsm کاهش اندازۀ SAM رانشان داد. فنوتیپ های مخالف بین fsm و fas1 نشان میدهد که حفظ SAM بین برنج و آرابیدوپسیس به صورت متفاوت تنظیم میشود.

کلیدواژه ها:مریسم شاخه مسطح (Flattened shoot meristem)، برنج، مریستم راسی، CAF-1،چرخۀ سلول، Fasciata1

مقدمه: در گیاهان آلی، تمام اندام های بالای زمینی و زیرزمینی از مریستم (بخشینه) های راسی شاخه (  SAMها) و مریستم (بخشینه) های راسی ریشه (RAM) تولید می شوند. این مریستم (بخشینه) ها قابلیت چندگانۀ pluripotency)) خود را حفظ می کنند و در سرتاسر مراحل تولید مثل و رویشی، مرتبا اندام و بافتهای جدید تولید میکنند. بنابراین، مکانیسم چگونگی حفظ کامل SAM اهمیت اساسی در بیولوژی گیاهی رشد و نمو دارد. ژن های متعددی که در حفظ SAM شرکت میکنند در آرابیدوپسیس شناخته شده اند.  SHOOT MERISTEMLESS (STM) و WUSCHEL (WUS) از جهش یافته های آنها به همراه تشکیل و یا حفظ  SAM برآمده شناسایی شدند  (Barton و Poethig، 1993) و( Laux و همکاران، 1996). STM ( لانگ و همکاران 1996) با KNOTTED1 ذرت ( هاک و همکاران 1989) و OSH1 برنج ( ماتسوکا و همکاران 1995) همولوگ (نظیر) میباشد. 

تأثیر امواج الکترومغناطیس میکروویو(MU ) و رادیوفرکانس(RF) بر تراکم قدرت غیرحرارتی در رنگدانه های شباهت دهنده در بافت های گیاهی مورد مطالعه قرار گرفت. افزایش رنگدانۀ فستوسنتتیک در هر دو مورد در مدت های پرتوگیری نسبتا کوتاه (1تا 4 ساعت) یافت شد. در حالی که در زمان پرتوگیری طولانی تر(12 ساعت) ، در گیاهانی که در معرض میکرویو بودند، کاهش محتوی رنگدانه ملاحظه شد. تصور می شود که افزایش کلی کارایی فتوسنتز  بر اساس داده های غیرمستقیم که بواسطۀ نسبت افزایش یافتۀ کلروفیل A/B بدست آمد، رخ می دهد. تأثیر برانگیزانندگی نسبی بر تجمع بیوماس در پرتودهی MW ملاحظه شد.

کلیدواژه: پرتو الکترومغناطیسی، Zea mays،نسبت کلروفیل، تجمع بیوماس

از آنجائیکه "پنجرۀ میکروویو" جو باعث نفوذ پرتو کیهانی  با فرکانس های دامنۀ GHz مشود، در نتیجه همواره یک مولفۀ مکروویوی در زمینۀ پرتو کیهانی وجود دارد. در دنیای مدرن، با استفاده از میکروویو پیچیدۀ منتشره از وسایل ارتباطی موجود در هوا ، سیستم های مراقبتی، صنعت، اهداف درمانی و تشخیصی در پزشکی- اهمیت آلودگی الکترومغناطیسی نیاز به تأکید بیشتر ندارد. یک نوشتۀ مفید در مورد تأثیر بیولوژیکی میدان های الکترومغناطیسی با فرکانس کم بر ارگانسم های گیاهی وجود دارد. اما به نظر می رسد که پاسخ های استنباط شده از گونه های گیاهی مختلف در یک روش پیچیده هم به پارامترهای فیزیکی و هم منبع تابش دهی (فرکانس،تراکم قدرت، پالس ها یا امواج هاپیوسته، طول مدت پرتوفکنی و غیره) و وضعیت مغناطیسی مادۀ بیولوژی (مرحلۀ رویشی، پیش تیمار،محیط و غیره) بستگی دارد؛ علیرغم این، پارمترهای بیولوژیکی گوناگون منجر به آشکارشدن جنبه های گوناگون واکنش بین امواج الکترومغناطیسی و مادۀ تحت تابش می شود. نمونه هایی در این باره وجود دارد که به آنها خواهم پرداخت.

 Muraji و دیگران (1998) گزارش دادند که یک میدان مغناطیسی با فرکانس کم تقریبا 10 Hz باعث تحریک رشد ریشه های غلات شده است. در حالی که در مورد فرکانس های بالا یعنی بالای 240 Hz، رشد متوقف شد.

 در گیاهان، پیری علاوه بر اینکه آخرین مرحله ایی که منجر به مرگ کل ارگانیسم میشود، در رشد و نمو گیاه نیز نقش دارد و در تجزیۀ هماهنگ ماکرومولکول ها و سیالیت مواد مغذی از بافت های رو به پیری به بافت های در حال نمو گیاه عمل میکند. تصور می شود که رادیکال های آزاد نقش اساسی در رشد و نمو گیاه داشته باشند، بویژه رادیکال های مشتق شده از اکسیژن. از آنجائیکه این مولکول ها شدیدا سمی هستند، سطوح متفاوت گونه های اکسیژن واکنشی باید بسیار منظم شوند. بااینحال پراکسید هیدروژن در غلظت های کم به عنوان مولکول نشانه دهی عمل میکند.  بنابراین، تنظیم هماهنگ سیستم جاروب رادیکال آزاد که شامل ترکیبات آنزیمی مانند کاتالاز، سوپراکسید دیسموتاز و آسکوربات پراکسیداز و مولکول های غیر آنزیمی میشود مانند آسکوربات و گلوتاتیون، ضروری و اساسی است. افزایش سطوح رادیکال در طی پیری نه تنها در اثر افزایش تولید رادیکال ها است بلکه به دلیل عدم ظرفیت آنتی اکسیدانی نیز میباشد. 

کلیدواژه: پیری برگ، تنش اکسایشی، رادیکال های اکسیژن آزاد، تنظیم پیری 

از زمان تکمیل توالی های ژنومی ارگانیسم های متعدد ، تجزیه و تحلیل پروتئوم توجهات را به تعیین کارکرد و شبکۀ کارکردی پروتئین ها معطوف کرده است.این تجزیه و تحلیل با جدا سازی و شناسایی پروتئین ها، تعیین کارکرد و نقش آنها و شبکۀ کارکردی و ساخت یک پایگاه داده ای مناسب حاصل می شود. پیشرفت های بسیاری در زمینۀ جداسازی و شناسایی پروتئین ها مانند الکتروفروز دو بعدی ،کروماتوگرافی نانو مایع و طیف سنجی جرمی به سرعت حاصل شده اند. برخی تکنولوژی های جدید مانند طیف سنجی جرمی بالا- پایین  و خاص سازی میل ترکیبی پشت سر هم  بوجود آمده است. این روش ها امکان تجزیه و تحلیل توان عملیاتی زیاد کارکرد و شبکۀ کارکردی پروتئین ها در گیاهان را فراهم می کند. اما برای رسیدگی به اطلاعات زیاد حاصل از این تجزیه و تحلیل های پروتئوم ، روش ها و نرم افزارهای پیچیده تری لازم است. پیشرفت و انطباق این تکنیک ها ، تجزیه و تحلیل برش عمودی پروتئین ، شناسایی تغییرات بعد از ترجمه و فعل و انفعال پروتئین پروتئین را آسان می کند که برای روشن سازی وظایف پروتئین حیاتی است. 

کلیدواژه: پروتئوم،طیف سنجی جرمی، برش عمودی پروتئین ، تغییرات بعد از ترجمه، و فعل و انفعال پروتئین- پروتئین، گیاه

شناسايي ريزماهواره ها در بين پشیز بالان بسيار ضعيف بوده است.  ما نشان داده ايم كه انجام ISSR امكان پذير است و كاربردپذيري آنها در تغيير specific-inter و intra در برخي جمعيت هاي شب پره را نشان خواهيم داد. 

پشیز بالان نسبت به تغييرات آب و هوايي و زيستگاه حساس هستند. ما جمعيت هاي شب پره را در زيستگاه هاي طبيعي و توزیع شده در کوه های پیرنه كشور فرانسه آناليز مي كنيم. ما سعي كرديم كه به يك روش چندبعدي قابل استفاده در تعیين گونه ها دست يابيم تا بدين ترتيب تفاوت هاي ژنتيكي جزئي در ژنوم هستۀ بيد را نشان دهيم. 

در مقايسه با ساير حيوانات، مطالعات ريزماهواره اي نسبتا كمي بر روي  پشیز بالان انجام گرفته است.  تنها چند مطالعه ايت كه بر روي ISSR كار كرده اند. يكي از دلايل آن ان است كه تصور ميشده  كه ريزماهوارها در پشیز بالان وجود ندارد يا اينكه به ندرت يافت مي شوند.  بااينحال، Meglecz و Solignac(1998) و Happer و ديگران مكان تكرارها را در ريزماهواره هايی حشرات با موفقيت تعيين كردندn (CA ). 

ما دريافتم كه :1) پرايمر n(CA ) بيشترين پروفايل هاي اطلاعات را ارائه مي دهد 2) پروفايل هاي DNA بين گونه ها اساسا با هم فرق دارد 3) از مقايسۀ پروفايل هاي ISSR مي توان براي مطالعۀ تغيير intra و inter با موفقيت استفاده كرد. 

چالش عمده ایی که بیولوژیست ها در رابطه با رشد ونمو گیاه با آن مواجه اند به درک مکانیسم های بر می گردد که رشد و نمو کلی سیستم های پیچیده را کنترل می کنند. مطالعۀ حاضر بر مکانسم هایی متمرکز است که تفکیک، رشد و معماری سیستم های ریشه را شکل میدهند. نقش نشانۀ رشۀاصلی  یعنی سیتوکینن (CK) به همراه نقش نشانۀ شاخه یعنی اکسین( ایندول-3- استیک اسید، IAA) و واکنش آنها تجزیه و تحلیل خواهد شد (Coenen و Lomax 1997، Bangerth و دیگران 2000؛ Nordstro¨m و دیگران 2004؛ Woodward و Bartel 2005). ستوکینن ها مولکول های نشانه دهی هورمونی هستند که نقش اساسی در تنظیم سیتوکینن ها، رشد و نمو در گیاهان ایفا می کنند. در یک گیاه دست نخورده، سلول های زندۀ ریشه و شاخه هر دو قادرند CKها و همچنین هورمون های نشانه دهی اکسین را تولید کنند(Miyawaki و دیگران 2004، Nordstro¨m و دیگران، 2004؛ Aloniو دیگران 2005؛ Tanaka و دیگران 2005). بااینحال،  با وجود اینکه  CK و IAA هر دو در ریشه و شاخه تولید می شوند (Nordstro¨m و دیگران 2004، Ljungو دیگران 2005) اما تولید این نشانه های هورمونی عمده به صورت تصادفی رخ نمی دهد. بلکه توسط مکان سلولهای سنتز کننده در بدنۀ گیاه و مرحلۀ نموی آنها تنظیم میشود و تحت تأثیر شرایط محیطی می باشد. اندام های جوان شاخه ، جایگا های اصلی تولید IAA هستند (Aloni و دیگران 2003،2006)، در حالی که نوک های ریشه جایگاه اصلی سنتز CKهستند ( Aloniودیگران 2004،2006).

نشانه ها از جایگاه های تولید هورمون از طریق مسیرهای ساختاری خاص و توسط مکانیسم های مختلف حرکت می کنند تا تفکیک و نمو گیاه را تنظیم کنند (Aloni 2004، Aloni و دیگران 2005). عدم بیان ایزوپنتنیل ترانس فراز (IPT ) در مریستم های رأسی شاخه(Miyawaki و دیگران 2004) با نبود CK آزاد در مریستم های رأسی شاخۀ جوانه های 3 روزۀ آرابیدوپسیس تالیانا (Aloni و دیگران 2004) همخوانی سازگاری داشت و نبود آن در جوانه های جانبی گیاهان مسن تر که تحت شرایط تقریبا بدون تعرق رشد یافته بودند (Aloni و دیگران 2005) نشان می دهد که جوانه های رأسی شاخه ، ظاهرا جایگاه اصلی سنتز CK نیستند (شکل 1).

مطالعۀ حاضر اولین گزارش دربارۀ تشکیل کشت های کالوزگیاهکی از بافت جوانه، احیای گیاهان از طریق گیاهک زایی سوماتیک و پیشرفت سیستم احیا ازپروتوپلاست به گیاه با استفاده از سه گونۀ وحشی Cyclamen یعنی Cyclamen graecum Link،Cyclamen mirabile Hildebrand و Cyclamen trochopteranthum Schwarz می باشد ( واژه مترادف Sprenger Cyclamen alpinum hort. Dammann ex). امکان تشکیل کالوز گیاهک و احیا از طریق گیاهک زایی سوماتیک برای هر گونه شدبدا به ژنوتیپ وابسته بود. از 0.5 g کالوز، حدود 1461 گیاهک سوماتیک در موقعی  C. mirabile تشکیل شد. محیط های کشت با غلظت های متفاوتی از تنظیم کننده های رشدی گیاه، CaCl2 و زغال چوب فعال شده تأثیر قابل توجهی بر شکل گیری گیاهک در گونه داشتند. حدود 1.4×106 پروتوپلاست از 1 g تعلیق سلول C. graecum جدا شدند. پاسخ های رشدی گوناگون پروتوپلاست ها در دو عامل تعبیه کننده یعنی آگارز و آلگینات برای گونه های مختلف Cyclamen مشاهده شد. این ویژگیهای رشدی خاص به عنوان نشانگر گزینش برای آزمایشات ترکیبی(fusion) در آینده استفاده شدند. برای هردو سیستم کشت پروتوپلاست، گیاهک هایسوماتیک احیا شدند، برای plantlets پرورش داده شدند و با شرایط گلخانه ایی سازگار شدند.

کلید واژه ها : آگاروز، آلگینات، Cyclamen alpinum، Cyclamen graecum، Cyclamen mirabile، گیاه سیکلامن، جداسازی پروتوپلاست، تکثیر رویشی

دستۀ (Cyclamen Myrsinaceae) شامل تقریبا 22 گونه میشود (Grey-Wilson،2003) که عمدتا در کشورهای اطراف و آبگیر مدیترانه ایی پراکنده هستند. برخی گونه ها از قرن هجدهم در کشورهای اروپای غربی کشت شده اند. اما تنها گونه ایی که اهمیت اقتصادی جهانی داشته Cyclamen persicum Miller بود. استثنائاتی وجود دارد و آن این که برخی گونه ها مانند C. coum Miller و C. hederifolium Aiton بندرت کشت میشوند. زیرا رشد آنها کند است و ملزومات کشت آنها بسیار ناشناخته است. Cyclamen graecum Link در قسمت هایی از یونان و جزایر آن یافت میشود. Cyclamen mirabile Hildebrand و همچنین  Cyclamen trochopteranthum Schwarz (مترادف Cyclamen alpinum hort. Dammann ex Sprenger) بومی منطقۀ جنوب غرب آنتالیا در ترکیه می باشد (Grey-Wilson، 2003). سه گونه به دلیل برخی ویژگی های باارزش که در کالتیوارهای C. persicum وجود ندارد، انتخاب شدند.

در این مقاله اقداماتی در جهت انتخاب ژنوتیپ های مسئول در آزمایشگاه و ترکیب پروتوپلاست های  جدا شده براسیکا کاریناتا و براسیکا ناپوس تولید کنندۀ خطوط (BC DH Dodolla، BC D-1، BC DH-6، و BN OP-1, BN-SL-03/04) بدست آمده از آزمایشات قبلی انجام شد. ترکیب سه غلضت متفاوت PEG  (20%،25% و 30%) و دو دورۀ متفاوت تیمار (15و 20 دقیقه) آزمایش شد. ما در آزمایشات خود، ژنوتیپ های متعددی ( براسیکا کاریناتا DH BC-6  و DH BC-1، براسیکا ناپوس DH OP-01) با قابلیت  احیاء رضایت بخش کالوز کشت های پروتوپلاست را شناسایی کریم. ترکیب درست و کامل غلضت وزمان  تیمار PEG، فراوانی ترکیب پروتوپلاست بین ژنوتیپ های مورد استفاده را تعیین کرد. با وجود اینکه طبق ارزیابی ها محلول PEG 30% بهترین غلظت را داشت اما مقدار زیاد multifusantها که در کاربردهای عملی لزومی ندارد، با تیمار طولانی تر PEG  به طور ویژه در ظروف پتری مشاهده شد. در کل، 25% PEG به همراه 20 دقیقه تیمار، اندازۀ ترکیب رضایت بخش بود و میزان دوام پذیری نیز خوب بود. 

کلیدواژه: براسیکا کاریناتا، براسیکا ناپوس، کشت پروتوپلاست، ترکیب پروتوپلاست

مقدمه:

دستۀ براسیکا شامل گونه های زراعی متعدد می باشد که درسرتاسر دنیا از ارزش اقتصادی بالا برخوردارند. بنابراین، این محصولات با استفاده از روش های متعارف، نه تنها پرورش دهندگان را به خود جلب میکنند بلکه کسانی که با روش های بیوتکنولوژی نیز سروکار دارند به این محصولات توجه نشان می دهند. در سالهای اخیر، اقدامات اساسی در زمینۀ تحقیق بر روی براسیکا بیشتر بر کاربرد تکنولوژی کشت بافت برای بهبود و ارتقاء محصول متمرکز بوده است. روشهای کشت ریزهاگ و کشت پروتوپلاست برای دستکاری ژن خارجی به وفور انجام می شود . زیرا از این طریق می توان تنوع ژنتیکی را گسترش داد.

جنگل های هیرکانیان از تالش در کشور جمهوری آذربایجان گسترده میشود و دامنه های شمالی کوههای البرز در شمال ایران در استان های گیلان، مازندران و گلستان را پوشش میدهد.  پوشش گیاهی اساسا از جنگل های برگ ریز تشکیل می دهد. گونه های گرمادوست Arcto-Tertiary  مانند Parrotia persica، Gleditsia caspica،  Zelkova carpinifolia  و Pterocarya fraxinifolia پوشش گیاهی در ارتفاعات کم را تشکیل می دهد. تنوع گونه های درختی در ارتفاعات زیاد افزایش میابد . در این ارتفاعات جنگل های نیمه آلپی (subalpine) و خلنگ زارهای  کم بوتۀ مرز جنگل جای خود را به علفزارهای آلپی در دامنه های شمالی و جلگۀ thorn-cushion ایران و تورانیان رو به قله ها و دامنه های شمالی میدهند.  تا کنون 3234 گونه متعلق به 856 دسته و 148 خانوادۀ گیاهان آوندی از استان های شمالی ایران و تالش جمهوری آذربایجان گزارش شده است. انواع اصلی پوشش گیاهی منطقۀ جنگلی هیرکانیان شامل موارد زیر می شود: 1) پوشش گیاهی تپه ماسه ایی در امتداد سواحل دریای خزر 2) اجتماع علفزارهای پوشیده C4 بر روی چینه های صخره ایی 3) پوشش گیاهی آبی بر روی تالاب ها 4) جنگل های دره ایی و رودخانه ایی 5) جنگهای برگریز پست و آبرفتی 6) جنگل های برگریز کوهستانی و کوهپایه ایی 7) جنگلهای برگریز دامنه ایی (Quercusmacranthera) 8) درختزارها و خلنگزارهای انتقالی و وراثتی 8) درخت زارهای Cupressus sempervirens و Thuja orientalis 9) جنگل های سرو کوهی 10) چمنزارهای آلپی و نیمه آلپی 11) جلگۀ کوهستانی پوشیده با گونۀ thorn-cushion و گیاهان خشک زی 12) اجتماعات صخره ایی 13) اجتماع گیاهان شوره زی 14) جلگۀ Artemisia spicigera و بیابان شبیه تپه 15) رستنگاه های میان مواد پوسیده و فاسد 16) مناظر فرهنگی و جنگلهای مصنوعی.

شواهد بدست آمده از مطالعات انجام شده بر روی سلسله خاک های بادآورده / palaeosol، تغییرات طولانی مدت سطح دریای خزر ورسوبات دریاچه ایی/ذغال کک در شمال ایران نشانگر سابقۀ پوشش گیاهی و جوی منطقۀ جنوب خزر می باشد. مطابق این بررسی ها، در طی اوایل دوران پلیستوسن، حداقل قسمت هایی از منطقه تحت پوشش گیاهی جلگه مانند بود و آب و هوا نسبتا از آب و هوای فعلی گرمتر بود. علاوه بر این تصور میشود که شمال ایران منطقۀ وسیعی بوده که تجمع گرد و غبار و تشکیل خاک های باد آورده در طی دوران یخ زدگی پلیستوسن افزایش داشته و این رویداد همزمان با تغییرات عمدۀ آب و هوا در جنوب شرقی اروپای مرکزی و آسیای مرکزی است. این مطالعات علاوه بر این تغییرات قابل توجه جوی در شمال کشور را نشان می دهد که آب و هوای سرد و خشک در این منطقه شرایط گرم و مرطوب در طی یخبندان پلیستوسن تغییرکرد.